瓊脂糖凝膠電泳,瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA

大家好,關于瓊脂糖凝膠電泳很多朋友都還不太明白,不知道是什么意思,那么今天我就來為大家分享一下關于瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA的相關知識,文章篇幅可能較長,還望大家耐心閱讀,希望本篇文章對各位有所幫助!
1瓊脂糖凝膠電泳的原理是什么?原理如下:
瓊脂糖凝膠電泳是用瓊脂糖作支持介質的一種電泳 ***。其分析原理與其他支持物電泳最主要區別是:它兼有“分子篩”和“電泳”的雙重作用 。
瓊脂糖凝膠具有 *** 結構,物質分子通過時會受到阻力,大分子物質在涌動時受到的阻力大,因此在凝膠電泳中,帶電顆粒的分離不僅取決于凈電荷的性質和數量,而且還取決于分子大小,這就大大提高了分辨能力 。
但由于其孔徑相比于蛋白質太大,對大多數蛋白質來說其分子篩效應微不足道,現廣泛應用于核酸的研究中 。
目前多用瓊脂糖為電泳支持物進行平板電泳,其優點如下:
(1)瓊脂糖凝膠電泳操作簡單,電泳速度快,樣品不需事先處理就可以進行電泳 。
(2)瓊脂糖凝膠結構均勻,含水量大(約占98%~99%),近似自由電泳,樣品擴散較自由電流,對樣品吸附極微,因此電泳圖譜清晰,分辨率高,重復性好 。
(3)瓊脂糖透明無紫外吸收,電泳過程和結果可直接用紫外光燈檢測及定量測定 。
(4)電泳后區帶易染色,樣品極易洗脫,便于定量測定 。制成干膜可長期保存 。
以上內容參考:百度百科-瓊脂糖凝膠電泳
2瓊脂糖凝膠電泳的原理什么瓊脂糖凝膠電泳的原理:瓊脂糖凝膠電泳是常用的用于分離、鑒定DNA、RNA分子混合物的 *** ,這種電泳 *** 以瓊脂凝膠作為支持物,利用DNA分子在泳動時的電荷效應和分子篩效應,達到分離混合物的目的 。
DNA分子在高于其等電點的溶液中帶負電,在電場中向陽極移動 。在一定的電場強度下,DNA分子的遷移速度取決于分子篩效應,即分子本身的大小和構型是主要的影響因素 。DNA分子的遷移速度與其相對分子量成反比 。
不同構型的DNA分子的遷移速度不同 。如環形DNA分子樣品,其中有三種構型的分子:共價閉合環狀的超螺旋分子(cccDNA)、開環分子(ocDNA)、和線形DNA分子(IDNA) 。這三種不同構型分子進行電泳時的遷移速度大小順序為:cccDNA>IDNA>ocDNA
核酸分子是兩性解離分子,pH3.5是堿基上的氨基解離,而三個磷酸基團中只有一個磷酸解離,所以分子帶正電,在電場中向負極泳動;而?pH8.0-8.3時,堿基幾乎不解離,而磷酸基團解離,所以核酸分子帶負電,在電場中向正極泳動 。
不同的核酸分子的電荷密度大致相同,因此對泳動速度影響不大 。在中性或堿性時,單鏈DNA與等長的雙鏈DNA的泳動率大致相同 。
擴展資料
影響核酸分子泳動率的因素
1、樣品的物理性狀
即分子的大小、電荷數、顆粒形狀和空間構型 。一般而言,電荷密度愈大,泳動率越大 。但是不同核酸分子的電荷密度大致相同,所以對泳動率的影響不明顯 。
對線形分子來說,分子量的常用對數與泳動率成反比,用此標準樣品電泳并測定其泳動率,然后進行DNA分子長度(bp)的負對數——泳動距離作標準曲線圖,可以用于測定未知分子的長度大小 。
DNA分子的空間構型對泳動率的影響很大,比如質粒分子,泳動率的大小順序為:cDNA>IDNA>ocDNA但是由于瓊脂糖濃度、電場強度、離子強度和溴化乙錠等的影響,會出現相反的情況 。
2、支持物介質
核酸電泳通常使用瓊脂糖凝膠和聚丙烯酰胺凝膠兩種介質,瓊脂糖是一種聚合鏈線性分子 。含有不同濃度的瓊脂糖的凝膠構成的分子篩的網孔大小不同,是于分離不同濃度范圍的核酸分子 。聚丙烯酰胺凝膠由丙烯酰胺(Acr)在N,N,N′-四甲基乙四胺(TEMED)和過 *** 銨(AP)的催化下聚合形成長鏈,并通過交聯劑N,N′-亞甲雙丙烯酰胺(Bis)交叉連接而成,其網孔的大小由Acr與Bis的相對比例決定 。
瓊脂糖凝膠適合分離長度100至60的分子,而聚丙烯酰胺凝膠對于小片段(5bp-500bp)的分離效果更好 。選擇不同濃度的凝膠,可以分離不同大小范圍的DNA分子 。
3、電場強度
電場強度愈大,帶點顆粒的泳動越快 。但凝膠的有效分離范圍隨著電壓增大而減小,所以電泳時一般采用低電壓,不超過4V/cm 。而對于大片段電泳,甚至用0.5-1.0V/cm電泳過夜 。進行高壓電泳時,只能使用聚丙烯酰胺凝膠 。
4、緩沖液離子強度
核酸電泳常采用TAE、?TBE、TPE三種緩沖系統,但它們各有利弊 。TAE價格低廉,但緩沖能力低,必須進行兩極緩沖液的循環 。TPE在進行DNA回收時,會使DNA污染磷酸鹽,影響后續反應 。所以多采用TBE緩沖液 。

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